BIENVENIDOS!!!!


¡La Cátedra de Biología Celular correspondiente a la carrera de Bioquímica y la Cátedra de Biología Celular y Molecular correspondiente a la carrera de Licenciatura en Biotecnología de la Facultad de Bioquímica, Química y Farmacia de la U.N.T les da la bienvenida a su nuevo espacio!

Aquí se publicarán todas las cosas de interés para el desarrollo del cursado. Usualmente se utilizará este espacio para:

- publicar noticias de interés para nuestra disciplina;

- hacer anuncios o publicaciones sobre cuestiones del cursado, la cátedra, los estudiantes o de todos

- recordar fechas significativas como los finales, parciales, trabajos prácticos, promociones.

Les recomendamos a todos los estudiantes que agenden la dirección de este blog como página de cabecera durante el cursado.

Estamos a su disposición!



Mostrando entradas con la etiqueta TRABAJOS PRACTICOS. Mostrar todas las entradas
Mostrando entradas con la etiqueta TRABAJOS PRACTICOS. Mostrar todas las entradas

martes, 3 de septiembre de 2013

NOTAS TP1 - Comisión 1 Lic. Biotecnología

TODOS APROBADOS

Balceda, María Belén…………Ausente
Mansilla, Flavia Ivana…………Ausente
Perez Rollarte, José…………..Ausente
Rosalez, Pamela………………Ausente
Soria, Jorge…………………… Ausente
Taboada, Luis………………….Ausente

lunes, 12 de agosto de 2013

INICIO TRABAJOS PRÁCTICOS 2013

Los trabajos prácticos para ambas carreras iniciarán a partir de la
Semana del 2 de Septiembre

martes, 27 de noviembre de 2012


RECUPERACIÓN DE TRABAJOS PRÁCTICOS

·      LUNES 3 DE DICIEMBRE 9:00 hs (AULA TERRAZA)
TP 1 – TP 2

·      MARTES 4 DE DICIEMBRE 9:00 hs (AULA TERRAZA)
TP 4 - TP 6

·      MIÉRCOLES 5 DE DICIEMBRE 9:00 hs (AULA TERRAZA)
TP 8

·      MIÉRCOLES 5 DE DICIEMBRE 16:00 hs (ANFITEATRO)
TP 5

·      JUEVES 6 DE DICIEMBRE 18:00 hs (ANFITEATRO)
TP 7 – TP 9

miércoles, 7 de noviembre de 2012

TRABAJO PRÁCTICO N° 9


BIOLOGÍA CELULAR
BIOLOGÍA CELULAR Y MOLECULAR
2012
Temario Trabajo Práctico N° 9
APOPTOSIS – PROLIFERACIÓN CELULAR – CULTIVOS CELULARES

Modalidad: Teórico- Práctico

Muerte celular programada y su regulación. Participación en procesos fisiológicos. Cambios morfológicos y bioquímicos. Vía apoptótica. Moléculas involucradas. Comparación de la vía apoptótica en C. elegans y en vertebrados. Reguladores proapoptóticos. Factor de necrosis tumoral y señales de muerte. Factores de supervivencia o factores tróficos. Señalización de la supervivencia celular. Métodos de estudio de la apoptosis.
Proliferación celular. Métoodos para el estudio del ciclo celular. Citometría de flujo. Cáncer. Muerte celular: necrosis y apoptosis. Métodos para el estudio de la apoptosis. Fundamento del método que emplea Anexina V y Cy3.18 (AnnCy3).
Cultivos celulares. Evolución de los cultivos celulares. Cultivos en monocapa y en suspensión. Tipos de cultivos. Líneas celulares. Ventajas e inconvenientes de las técnicas de cultivo celular. El laboratorio de cultivo celular. Medios de cultivo. Contaminaciones. Métodos de disgregación de células en placa. Aplicaciones.

Material de estudio:
·        La célula. Cooper, 5ta. Edición: Capítulo 17: Muerte y renovación celular (pág 693-705).
·        La célula. Cooper, 4ta. Edición: Capítulo 17: Muerte y renovación celular: esquemas de las pág. 693 (Fig. 17.4) y 697 (Fig. 17.8).
·        Métodos de detección de la apoptosis. Aplicaciones y limitaciones. Artículo de revisión. Moreno y col., Cancerología (2000) Vol. 45, N° 4: 275-280.
·        Libro: Conceptos Teóricos y Prácticos para el estudio de Células y Biomoléculas: Capítulo 4 “Cultivos Celulares” y Capítulo 5 “Proliferación y muerte celular”.

martes, 30 de octubre de 2012

TEMARIO TRABAJO PRÁCTICO N°8

TRABAJO PRÁCTICO N° 8
(LIC. EN BIOTECNOLOGÍA)

TECNOLOGÍA DEL ADN RECOMBINANTE

MODALIDAD: PRÁCTICO DE LABORATORIO


Temario teórico: Tecnología del ADN recombinante. Enzimas: endonucleasas de restricción (tipos, nomenclatura, protección por metilación), fosfatasas, quinasas, ADN ligasas, ADN polimerasa I. Vectores de clonado. Vectores derivados de plásmidos (tipos). Vectores derivados de bacteriófagos. Vectores combinados de plásmidos y fagos. Cósmicos. Fásmidos. Cromosomas artificiales. Estrategias para clonar un fragmento de ADN en un vector plasmídico. Inserción del fragmento de ADN en un gen de resistencia del vector. Inserción del fragmento de ADN en el gen lacZ del vector. Defosforilación. Clonado direccional. Introducción de información genética en las bacterias. Protocolos Básicos: Preparación de células competentes de Escherichia coli JM109. Transformación. Expresión de ADN exógeno en bacterias. Control de la expresión génica en procariotas y eucariotas. Expresión de genes eucariotas en bacterias: intrones, promotores, sitio de unión al ribosoma.


Transformación de células competentes con plásmido recombinante: Se realizará la transformación por shock térmico de células competentes de E. coli DH5  con un vector de clonado recombinante. Se sembrarán las bacterias en medio LB agar conteniendo el antibiótico ampicilina para la selección de los clones transformados.

Material de estudio: Libro Conceptos Teóricos y Prácticos para el estudio de Células y Biomoléculas: Capítulo 8 ¨Tecnología del ADN recombinante¨ (páginas 137-154). Libro Biología Molecular y Biotecnología de J. M. Walker y E. B. Gingold. Capítulo 4 ¨La expresión del DNA exógeno en bacterias¨ (páginas 67-79).

El material de estudio estará disponible en focopiadora a partir del 30/10/12  

lunes, 29 de octubre de 2012

TEMARIO TRABAJO PRÁCTICO N° 8


Trabajo Práctico N° 8
(BIOQUÍMICA)

Aplicaciones de Biología Molecular al diagnóstico de enfermedades genéticas.

Modalidad: PRÁCTICA DE LABORATORIO
Métodos de diagnóstico: Diagnóstico molecular directo. Detección directa de mutaciones que alteran un sitio de restricción. Detección directa de la secuencia mutada mediante oligonucleótidos específicos de alelo. Detección de mutaciones por delección. Detección de mutaciones inestables. Diagnóstico indirecto (ligamiento de marcadores).
Complejo Mayor de Histocompatibilidad (CMH)
Práctica de laboratorio: Identificación de los genes DRB3, DRB4 y DRB5 del CMH mediante amplificación por PCR.
Material de estudio:
“El diagnóstico de enfermedades hereditarias” Dr. Palazón, JR
“ El Complejo Mayor de Histocompatibilidad”.

El material de estudio estará disponible en fotocopiadora a partir del 30/10/12

miércoles, 17 de octubre de 2012


Trabajo Práctico Nº 7
(BIOTECNOLOGÍA-BIOQUÍMICA)

 ADN móvil.


Modalidad: PRÁCTICA DE LABORATORIO
Amplificación de la secuencia Alu por PCR. Se amplificará la secuencia Alu Ya5 que presenta polimorfismo de inserción en el intrón 16 del gen que codifica a la enzima conversora de angiotensina I. Se analizarán los productos de PCR mediante electroforesis en geles de agarosa. Se evaluará el polimorfismo de inserción de la secuencia Alu estudiada, determinando el tamaño de los productos amplificados.

Material de estudio: Libro Conceptos Teóricos y Prácticos para el estudio de Células y Biomoléculas: Capítulo 10 (197-199).
Libro Biología Celular y Molecular (Lodish) Organización cromosómica de los genes y del ADN no codificador. ADN móvil. Pág. 408-424.
Libro Genética (Pierce), Pág. 296-309

viernes, 5 de octubre de 2012


TRABAJO PRÁCTICO Nº 6
MARCADORES MOLECULARES II

Modalidad: Teórico Práctico
Marcadores utilizados en la Identificación de personas. Perfilado de ADN por Southern Blot. Sondas de Locus único y de locus múltiple. Perfilado de ADN mediante PCR. Marcadores Microsatélites. Criterios de Inclusión y Exclusión.

MATERIAL DE ESTUDIO:
Conceptos Teóricos y Prácticos para el Estudio de las Células y Biomoléculas: Capítulo 10 (páginas 190 a 197)
Material Complementario de Estudio: La prueba de Paternidad con ADN

viernes, 28 de septiembre de 2012

Trabajo Práctico N° 5


Trabajo Práctico N° 5

Marcadores Moleculares I

Modalidad: TEÓRICO PRÁCTICO
Organización del genoma humano. Mapas genéticos. Mapas de ligamiento. Mapas físicos. Maracdores moleculares utilizados en la construcción de mapas. Polimorfismos de longitud de fragmentos de Restricción (RFLP). Polimorfismos de longitud de secuencias simples (SSLP). Polimorfismos de un solo nucleótido (SNP). Sitio de secuencia identificada (STS). Etiquetas de secuencia expresada (EST).

Material de estudio:
Conceptos Teóricos y Prácticos para el Estudio de Células y Biomoléculas. Capítulo 10.
Genomas (Brown): Capítulo 3: Mapeo de los genomas (pág. 67-74; 81-82; 87-101).
Introducción a la Biología Celular (Alberts): Investigación del genoma humano (pág. 315-323)

miércoles, 19 de septiembre de 2012


MATERIAL COMPLEMENTARIO: ARCHIVO PARA DESCARGAR:
PROTOCOLO TP 4 - 2012
MATERIAL COMPLEMENTARIO DE ESTUDIO TP Nº 4

Archivos para descargar:

M-mlv reverse transcriptase protocol

PCR master mix

taq recombinante






miércoles, 12 de septiembre de 2012


Trabajo Práctico Nº 4

 Amplificación de secuencias de ácidos nucleicos.
  
Modalidad: PRACTICA DE LABORATORIO.
Síntesis de ADNc. RT-PCR. Electroforesis de productos de amplificación.


Material de estudio: Libro Conceptos Teóricos y Prácticos para el Estudio de Células y Biomoléculas: Capítulo 9. Capítulo 4, replicación del ADN.(4.6) y Virus: parásitos del sistema genético celular (4.7)

lunes, 3 de septiembre de 2012


Trabajo Práctico Nº3: Amplificación de secuencias de ácidos nucleicos

Modalidad: Teórico Práctico

Reacción en cadena de la polimerasa (PCR): Etapas, Componentes, Diseño y Cinética de una reacción de PCR. Reacción de PCR a partir de ARN (RT-PCR): Componentes, Tipos de cebadores y diseño de una reacción de RT PCR. Modificaciones de la técnica de PCR: PCR múltiple, PCR anidada, PCR por contacto, PCR por comienzo en caliente, PCR anclada e inversa, ARMS PCR. PCR en tiempo real: Fundamento y sistemas de detección. Otras técnicas de amplificación de ácidos nucleicos: NASBA, TMA y LCR.

Material de estudio: Libro Conceptos Teóricos y Prácticos para el Estudio de Células y Biomoléculas: Capítulo 9. Biología Celular y Molecular (Lodish y col.): Capítulo 4, replicación del ADN.(4.6) y Virus: parásitos del sistema genético celular (4.7)

lunes, 27 de agosto de 2012



BIOLOGÍA CELULAR
BIOLOGÍA CELULAR Y MOLECULAR
2012
Temario Trabajo Práctico N° 2

Obtención de células mononucleares. Extracción de ARN total.
Modalidad: LABORATORIO
Obtención de linfocitos mediante centrifugación en gradiente de densidad y extracción de ARN total.
Material de estudio:
·        Libro Conceptos Teóricos y Prácticos para el estudio de Células y Biomoléculas:
Capítulo 6: Fraccionamiento celular. Tipos de centrifugación. Extracción de ARN. Determinación de la concentración de ARN y ADN.
Capítulo 4: Protocolo para la valoración de viabilidad celular por exclusión de Tripan Blue
·        Composición de la sangre. Protocolo de obtención de células mononucleares de sangre entera mediante centrifugación de equilibrio en gradiente de densidad.
·        Protocolo de Extracción de ARN.

martes, 21 de agosto de 2012

TRABAJOS PRÁCTICOS 2012


Temario Trabajo Práctico N° 1 
(Bioquímica y Lic. en Biotecnología)

AISLAMIENTO, SEPARACIÓN E IDENTIFICACIÓN DE MACROMOLÉCULAS

Modalidad: TEÓRICO-PRÁCTICO

Fraccionamiento celular. Tipos de centrifugación. Material de estudio: Libro Conceptos Teóricos y Prácticos para el estudio de Células y Biomoléculas: Capítulo 6 (pag. 97-100).

Electroforesis. Electroforesis en geles de poliacrilamida. Electroforesis en geles de agarosa. Métodos de tinción. Fundamentos de protocolos. Material de estudio: Libro Conceptos Teóricos y Prácticos para el estudio de Células y Biomoléculas: Capítulo 6 (pag. 107-119)

Métodos inmunocitoquímicos. Western blot. Southern blot. Northern blot. Chips de ADN. Hibridación in situ. Fundamentos de protocolos. Material de estudio: Libro Conceptos Teóricos y Prácticos para el estudio de Células y Biomoléculas: Capítulo 7 (pag. 121-136).

miércoles, 15 de agosto de 2012

Cronograma de Trabajos Prácticos

Trabajo Práctico
Fecha
Evaluación
TP1
Aislamiento, separación e identificación de macromoléculas
Miércoles 29-08
Jueves 30-08
Viernes 31-08
TP2
Obtención de células mononucleares. Extracción de ARN total
Semana del 03 al 07 de agosto
Bioquímica: Viernes 31-08
Biotecnología: en cada comisión
TP3
Amplificación de ácidos nucleicos.
Miércoles 12-09
Jueves 13-09
Viernes 14-09
TP4
RT-PCR
17-09 (Comisiones 1 y A)
Semana del 25 al 28 de septiembre
Bioquímica: Viernes 28-09, excepto comisión A.
Biotecnología: en cada comisión
TP5
Marcadores moleculares I
Miércoles 03-10
Jueves 04-10
Viernes 05-10
TP6
Marcadores moleculares II
Miércoles 10-10
Jueves 11-10
Viernes 12-10
TP7
ADN móvil
Semana del 22 al 26 de octubre
Bioquímica: Viernes 26-10
Biotecnología: en cada comisión
TP8
Clonado (biotecnología)
Semana del 05 al 09 de noviembre
En cada comisión
TP8
Diagnóstico de enfermedades genéticas
Semana del 05 al 09 de noviembre
Viernes 09-11
TP9
Apoptosis
Semana del 12 al 16 de noviembre
Bioquímica: Viernes 16-11
Biotecnología: en cada comisión

lunes, 21 de noviembre de 2011

RECUPERACIÓN TRABAJOS PRÁCTICOS 2011

ATENCIÓN CAMBIOS DE FECHAS!!!!

Las recuperaciones de los Trabajos prácticos se realizarán en las siguientes fechas:
  • Ausentes Justificados: Viernes 25 de noviembre 16 hs Aula F.
  • Trabajos Prácticos Desaprobados/Ausentes: a confirmar

lunes, 14 de noviembre de 2011

ATENCIÓN ALUMNOS!

TEÓRICO PRÁCTICO Nº 9 (Apoptosis)

Comisión "VIERNES":

Se dictará en el ANFITEATRO (viernes 16 hs) y no en el Aula F

jueves, 13 de octubre de 2011

TRABAJO PRÁCTICO Nº 7: ADN Móvil

Modalidad: PRÁCTICA DE LABORATORIO

Amplificación de la secuencia Alu por PCR. Se amplificará la secuencia Alu Ya5 que presenta polimorfismo de inserción en el intrón 16 del gen que codifica a la enzima conversora de angiotensina I. Se analizarán los productos de PCR mediante electroforesis en geles de agarosa. Se evaluará el polimorfismo de inserción de la secuencia Alu estudiada, determinando el tamaño de los productos amplificados.

Material de estudio: Libro Conceptos Teóricos y Prácticos para el estudio de Células y Biomoléculas: Capítulo 10 (197-201).

Libro Biología Celular y Molecular (Lodish) Organización cromosómica de los genes y del ADN no codificador. ADN móvil. Pág. 408-424.

Libro: Genética (Pierce), Pág. 296-309

viernes, 7 de octubre de 2011

TRABAJO PRÁCTICO Nº 6: MARCADORES MOLECULARES II

Modalidad: TEÓRICO-PRÁCTICO

Marcadores utilizados en la identificación de personas. Perfilado de ADN por Southern Blot. Sondas de locus único y de locus múltiple. Perfilado de ADN mediante PCR.

Material de estudio:
Conceptos Teóricos y Prácticos para el Estudio de Células y Biomoléculas. Capítulo 10 (pág. 187 – 197).
Material complementario de estudio (en fotocopiadora)